Мой домашний огород =)

[Ирина_]

11 часов назад, Ирина_ сказал:

. Саму теплицу я оценила в 20м кв производственной площади на глаз. Выходит - 3 кг с теплицы вместо 10 в 80 суток. 

Про свет забыла. По открытой инфе в нэте  1 месяц на рост и два на цветение - 18/6 и 12/12      3240 кВт - рост.  4320 кВт - цветение. 7560кВт расход ээ на мероприятие.Лампа накаливания. А диоды снизят в 1.5-2 раза расход.Но на картинке диодов нет.

11 часов назад, Moskit сказал:

а весь фільм не дивилися? Вже є і однойменний серіал (з іншими дійовими особами), але ще той стьоб))

Дивилася.Діалоги не запам'ятала.Думала там щось про світло.На задньому плані картинки рослини -  печаль.У сусіднього фермера хтось у кукурудзі висадив 2 рядки  5 км завдовжки. Кукурудза жовта, а ці зеленіше не буває, кукурудзу забили  і стояли як дерева гойдалися на вітрі. Я в біноколь дивилася і сміялася.Дерева коливаються на вітрі посередині поля зеленою доріжкою. Це диверсія проти нього – біологічною зброєю. А ще можна якомусь га@@ону дроном засіяти його газон у дворі амброзією, також весело, він її ще й поллє. Її потім викорчовувати вручну,  у мене в дитинстві біноколь був.

[youxim]

23.05.2024 в 00:48, Ирина_ сказал:

сохранность генетики - вообще отдельный разговор.

За описание картинки с урожаем двойной лайк). А что имеете в виду "сохранность генетики " ? В семечке разве нельзя генетику хранить? Замарочка с материнским растением реальная замарочка. Практически лабораторные условия с светом,температурой и вся эта хоботня вокруг одного двух растений? Выкладывайте)

[Ирина_]

17 часов назад, youxim сказал:

За описание картинки с урожаем двойной лайк). А что имеете в виду "сохранность генетики " ? В семечке разве нельзя генетику хранить? Замарочка с материнским растением реальная замарочка. Практически лабораторные условия с светом,температурой и вся эта хоботня вокруг одного двух растений? Выкладывайте)

ну в огурцах, с каждой репродукцией,качество плода падает. больше семечки набивает,меньше плод,вкус... но в огурцах изменения видимые наступят с Ф10 +- . а в диапазоне ф1 -5 разница вообще неразличима. только по всхожести. культура на картинке культивируется в виде гибридов сортовых + для закрытого грунта это однозначно феминизированный гибрид. мужское растение с развитыми вторичными пол.признаками + смесь генетик (сортов ). уже это только дает понимание,что следующая репродукция будет какой-то мутант предыдущего сорта. Ф2  отпадает. можно получить ф1 с материнского стебля/куста но там будет какая то часть семечки с преобладанием качеств других сортов и часть идентичны.в нете можно найти критерии оценки данной культуры. вкус,послевкусие,строгость на вдох/выдох ( и это с...ка оказывается разные показатели ))))  ), вкус на выдохе... вид, состояние эпидермы,запах и собственно - эхвект. ни о какой рулетке речь идти не может. в товарном виде нужна точная копия понравившегося гибрида и это важно. для открытых грунтов гибриды дополняются генами сортов стойких к болячкам и вредителям,а для закрытых этим можно пренебречь,потому как процесс контролируемый - температура,свет,вентиляция,полив - подкормка. и тд. в общем - имеем какойто сконструированный куст и нужна его копия. а это - клонирование черенкованием. а для этого необходима целая е@атория с материнскими растениями с которых они  черенкуют на  "посевочную " ,потом еще и еще. опыт голландских фермеров есть в нете. собственно как и все остальное мною написанное. это чисто коммерческая составляющая,а не агротехническая. потому как в теории можно с ф1 получить ф1(семечку ) но на практике это неточные копии... 

[Brocar]

21.05.2024 в 10:56, youxim сказал:

Выпилено из темы: "Очевидное-невероятное (наука, техника, спорт, курьезы и др.)"

 

Есть вопрос практического применения света. А именно - для теплиц. Как растение видит свет от например  ДРЛ 250 и эквивалент по мощности но от светильника на диодах ? Разницу вижу,а причины понять не могу,остается только свет. Потому как агросостовляющая не нарушена,изменен только источник света. Вопрос так же и экономический. Потому как цена светильника просто - одна,а цена светильника с спец.магазина почти 1000 евриков... 1 светильник на 2 м²  цена явно завышена,но комменты положительные.

Помимо освещенности важную роль играет спектр излучения ламп. Как считается растения предпочитают красную и синюю составляющую видимого спектра, хотя предпочтения меняются в зависимости от периода роста и созревания. У ртутных ламп с этим почти порядок

У светодиодов более узкий спектр излучения и более-менее нормальные показатели у ламп теплого свечения. Лампы для растений имеют добавочный красные и синие светодиоды.

Я полагаю, что и инфракрасный диапазон может влиять.

Информации и экспериментов по этой теме много

[youxim]

2 часа назад, Brocar сказал:

Лампы для растений имеют добавочный красные и синие светодиоды.

Да,мне тут различие как раз объяснили между обычными светильниками на диодах и специализированными. 

24.05.2024 в 00:43, Ирина_ сказал:

матрица набирается из белых,красных,зеленых и синих цветов диода,

Нашел светильник с указанием температуры света 3000 К, это теплый желтый. Решил,что все остальное по умолчанию,как в лампах приложится. По идее это та же хрень но дешевле в потреблении ээ. Но не приложилось и хрень оказалась разная... )

[Brocar]

3 часа назад, youxim сказал:

Да,мне тут различие как раз объяснили между обычными светильниками на диодах и специализированными. 

Нашел светильник с указанием температуры света 3000 К, это теплый желтый. Решил,что все остальное по умолчанию,как в лампах приложится. По идее это та же хрень но дешевле в потреблении ээ. Но не приложилось и хрень оказалась разная... )

У светильников температурой 3000К тоже есть завал по красному свету. А рекомендации типа 15 Вт мощности на 35см вы соблюдали? Свет направленный?

Змінено 3 червня користувачем Brocar

[Brocar]

3 часа назад, youxim сказал:

Да,мне тут различие как раз объяснили между обычными светильниками на диодах и специализированными. 

23.05.2024 в 21:43, Ирина_ сказал:

матрица набирается из белых,красных,зеленых и синих цветов диода,

Смысла добавлять синие, а тем более зеленые светодиоды я не вижу, у обычных светодиодных ламп и так пики излучения по этим цветам. Но практика может показать и иное.

[Ирина_]

5 часов назад, Brocar сказал:

Смысла добавлять синие, а тем более зеленые светодиоды я не вижу, у обычных светодиодных ламп и так пики излучения по этим цветам. Но практика может показать и иное.

зеленого много не бывает. он усиливает красный,может заменить синий,но главное -  у него более проникающая способность на растения,куда не проникает синий,красный - проникает зеленый. как лекарство втирать или уколом. на практике нормальный светильник включает в себя и ультрафиолет и инфракрасные диоды. с возможностью отключения инфракрасного и красного. или из трех кристаллов  и регулировкой спектра температуры света от белый холодный - красный + инфракрас ультафиолет. в бюджетном но оптимизированном без инфракрасн,ултрафиолета зеленый исправит косяки и синего и красного. в целом такая оптимизация  светильника.ну и на вегетации можно красный не глушить. температура света  у них оценочно 3000К - 2700К без регулировки спектра на всех стадиях растения. 

[Brocar]

6 часов назад, Ирина_ сказал:

зеленого много не бывает. он усиливает красный,может заменить синий,но главное -  у него более проникающая способность на растения,куда не проникает синий,красный - проникает зеленый. как лекарство втирать или уколом. на практике нормальный светильник включает в себя и ультрафиолет и инфракрасные диоды. с возможностью отключения инфракрасного и красного. или из трех кристаллов  и регулировкой спектра температуры света от белый холодный - красный + инфракрас ультафиолет. в бюджетном но оптимизированном без инфракрасн,ултрафиолета зеленый исправит косяки и синего и красного. в целом такая оптимизация  светильника.ну и на вегетации можно красный не глушить. температура света  у них оценочно 3000К - 2700К без регулировки спектра на всех стадиях растения. 

От физики перешли на ощущения😉

 

Green Spectrum (500-600nm)

Green light has the least effect on plant growth and development. The reason is that green light is mostly reflected by plants, and only a small amount is absorbed, making it the least efficient growth light spectrum for photosynthesis. However, it can still contribute to plant growth by providing a balanced spectrum of light.

https://www.spider-farmer.com/understanding-growth-light-spectrum/

Растения мы и видим зелеными, потому что они зеленый спектр почти не поглощают. А в обычной лампе, даже теплого свечения, он наиболее выражен.

 

Змінено 4 червня користувачем Brocar

[Ирина_]

9 часов назад, Brocar сказал:

От физики перешли на ощущения😉

Green Spectrum (500-600nm)

Green light has the least effect on plant growth and development. The reason is that green light is mostly reflected by plants, and only a small amount is absorbed, making it the least efficient growth light spectrum for photosynthesis. However, it can still contribute to plant growth by providing a balanced spectrum of light.

https://www.spider-farmer.com/understanding-growth-light-spectrum/

Растения мы и видим зелеными, потому что они зеленый спектр почти не поглощают. А в обычной лампе, даже теплого свечения, он наиболее выражен.

 

На деле только 10-50% спектра в зеленой области 500-600 нм отражается хлоропластами. Остальная энергия усваивается в процессе фотосинтеза и передается дальше  на нижние ярусы растения, которые обычно затенены. хлорофилл b, в сравнении с хлорофиллом a, имеет сдвинутый вправо  в зеленую область  пик поглощения света. Это важная физиологическая особенность растение в целом — это многоуровневая структура, в которой нижние листья имеют повышенную способность использовать зеленый свет благодаря усиленному синтезу хлорофилла b.

из Вашей ссылки - 

Цитата

Зеленый спектр. Спектр зеленого света не так важен для роста растений, как два вышеупомянутых света, но он все же имеет некоторые преимущества. Он проникает глубже в крону растения и может улучшить распределение света, что может привести к более равномерному росту.

и это не противоречит

Цитата

 он усиливает красный,может заменить синий,но главное -  у него более проникающая способность на растения,куда не проникает синий,красный - проникает зеленый. 

 Предистория эксперимента. хотели описать  влияние изменения освещенности на синтез в листе при данной длине волн Выводом стало то, что красный и синий свет усваивались хлоропластами по большей части в верхних слоях листа. Но главное, что на более глубоких слоях фиксирующая способность углерода не падала. Это значит, что там, где синие и красные лучи перестают работать, именно зеленый свет вносит существенный вклад в фотосинтез.

Цитата

 

 ""Для листа, который ориентирован нормально, зеленый свет приводит к довольно равномерной доле фотосинтетической способности, используемой на всех глубинах. Напротив, при синем свете 90%-ное насыщение верхних слоев достигается при 500 мкмоль м-2 с-1

Литература эксперимента.цитаты,ссылки на статьи

Bauer H. & Thöni W. (1988) Photosynthetic light acclimation in fully developed leaves of the juvenile and adult life phases of Hedera helix. Physiologia Plantarum 73, 31–37.

 ScholarVon Caemmerer S. & Farquhar G.D. (1981) Some relationships between the biochemistry of photosynthesis and the gas exchange of leaves. Planta 153, 376–387.

 ScholarVon Caemmerer S., Evans J.R., Hudson G.S. & Andrews T.J. (1994) The kinetics of ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase/oxygenase in vivo inferred from measurements of photosynthesis in leaves of transgenic tobacco. Planta 195, 88–97.

CASWeb of Science®Google ScholarChow W.S. & Anderson J.M. (1987) Photosynthetic responses of Pisum sativum to an increase in irradiance during growth. I. Photosynthetic activities. Australian Journal of Plant Physiology 14, 1–8.

CASWeb of Science®Google ScholarCui M., Vogelmann T.C. & Smith W.K. (1991) Chlorophyll and light gradients in sun and shade leaves of Spinacia oleracea. Plant, Cell and Environment 14, 493–500.

Web of Science®Google ScholarEvans J.R. (1987) The dependence of quantum yield on wavelength and growth irradiance. Australian Journal of Plant Physiology 14, 69–79.

Web of Science®Google ScholarEvans J.R. (1993) Photosynthetic acclimation and nitrogen partitioning within a lucerne canopy. II. Stability through time and comparison with a theoretical optimum. Australian Journal of Plant Physiology 20, 69–82.

CASWeb of Science®Google ScholarEvans J.R. (1995) Carbon fixation profiles do reflect light absorption profiles in leaves. Australian Journal of Plant Physiology 22, 865–873.

CASWeb of Science®Google ScholarEvans J.R. (1999) Leaf anatomy enables more equal access to light and CO2 between chloroplasts. New Phytologist 143, 93–104.

Web of Science®Google ScholarEvans J.R., Jakobsen I. & Ögren E. (1993) Photosynthetic light response curves. 2. Gradients of light absorption and photosynthetic capacity. Planta 189, 191–200.

CASWeb of Science®Google ScholarFarquhar G.D. (1989) Models of integrated photosynthesis of cells and leaves. Philosophical Transactions of the Royal Society of London Series B-Biological Sciences 323, 357–367.

CASWeb of Science®Google ScholarFarquhar G.D., Von Caemmerer S. & Berry J.A. (1980) A biochemical model of photosynthetic CO2 assimilation in leaves of C3 species. Planta 149, 78–90.

CASPubMedWeb of Science®Google ScholarFukshansky L. & Von Remisowsky A.M. (1992) A theoretical-study of the light microenvironment in a leaf in relation to photosynthesis. Plant Science 86, 167–182.

CASWeb of Science®Google ScholarGenty B., Briantais J.M. & Baker N.R. (1989) The relationship between the quantum yield of photosynthetic electron transport and quenching of chlorophyll fluorescence. Biochimica et Biophysica Acta 990, 87–92.

CASWeb of Science®Google ScholarJeje A. & Zimmermann M. (1983) The anisotropy of the mesophyll and CO2 capture sites in Vicia faba L. leaves at low light intensities. Journal of Experimental Botany 34, 1676–1694.

Web of Science®Google ScholarKagawa T. & Wada M. (1999) Chloroplast-avoidance response induced by high-fluence blue light in prothallial cells of the fern Adiantum capillus-veneris as analyzed by microbeam irradiation. Plant Physiology 119, 917–923.

CASPubMedWeb of Science®Google ScholarKoizumi M., Takahashi K., Mineuchi K., Nakamura T. & Kano H. (1998) Light gradients and the transverse distribution of chlorophyll fluorescence in mangrove and camellia leaves. Annals of Botany 81, 527–533.

CASWeb of Science®Google ScholarLeverenz J.W. (1988) The effects of illumination sequence, CO2 concentration, temperature and acclimation on the convexity of the photosynthetic light response curve. Physiologia Plantarum 74, 332–341.

Web of Science®Google ScholarMcCree K.J. (1971) The action spectrum, absorptance and quantum yield of photosynthesis in crop plants. Agricultural Meteorology 9, 191–216.

Web of Science®Google ScholarMoss D.N. (1964) Optimum lighting of leaves. Crop Science 4, 131–136.

Google ScholarNishio J.N. (2000) Why are higher plants green? Evolution of the higher plant photosynthetic pigment complement. Plant, Cell and Environment 23, 539–548.

CASWeb of Science®Google ScholarNishio J.N., Sun J.D. & Vogelmann T.C. (1993) Carbon fixation gradients across spinach leaves do not follow internal light gradients. Plant Cell 5, 953–961.

CASPubMedWeb of Science®Google ScholarÖgren E. & Evans J.R. (1993) Photosynthetic light response curves. 1. The influence of CO2 partial pressure and leaf inversion. Planta 189, 182–190.

Web of Science®Google ScholarOja V.M. & Laisk A.K. (1976) Adaptation of the photosynthesis apparatus to the light profile in the leaf. Soviet Plant Physiology 23, 381–386.

Web of Science®Google Scholar

Outlaw W.H.J. & Fisher D.B. (1975) Compartmentation in Vicia faba leaves. III. Photosynthesis in the spongy and palisade parenchyma. Australian Journal of Plant Physiology 2, 435–439.

CASGoogle ScholarPark Y.I., Chow W.S. & Anderson J.M. (1996) Chloroplast movement in the shade plant Tradescantia albiflora helps protect photosystem II against light stress. Plant Physiology 111, 867–875.

CASPubMedWeb of Science®Google ScholarPeterson R.B., Oja V. & Laisk A. (2001) Chlorophyll fluorescence at 680 and 730 nm and leaf photosynthesis. Photosynthesis Research 70, 185–196.

CASPubMedWeb of Science®Google ScholarRichter T. & Fukshansky L. (1996a) Optics of a bifacial leaf. 1. A novel combined procedure for deriving the optical parameters. Photochemistry and Photobiology 63, 507–516.

CASWeb of Science®Google ScholarRichter T. & Fukshansky L. (1996b) Optics of a bifacial leaf. 2. Light regime as affected by the leaf structure and the light source. Photochemistry and Photobiology 63, 517–527.

CASWeb of Science®Google ScholarRichter T. & Fukshansky L. (1998) Optics of a bifacial leaf. 3. Implications for photosynthetic performance. Photochemistry and Photobiology 68, 337–352.

CASWeb of Science®Google ScholarSatoh M., Kriedemann P.E. & Loveys B.R. (1977) Changes in photosynthetic activity and related processes following decapitation in Mulberry trees. Physiologia Plantarum 41, 203–210.

CASWeb of Science®Google ScholarSchreiber U., Kuhl M., Klimant I. & Reising H. (1996) Measurement of chlorophyll fluorescence within leaves using a modified pam fluorometer with a fiber-optic microprobe. Photosynthesis Research 47, 103–109.

CASPubMedWeb of Science®Google ScholarSun J. (1996) Photosynthetic Gradients across Spinach Leaves. PhD Thesis. University of Wyoming, Laramie, WY, USA.

Sun J.D. & Nishio J.N. (2001) Why abaxial illumination limits photosynthetic carbon fixation in spinach leaves. Plant and Cell Physiology 42, 1–8.

CASPubMedWeb of Science®Google ScholarSun J.D., Nishio J.N. & Vogelmann T.C. (1998) Green light drives CO2 fixation deep within leaves. Plant and Cell Physiology 39, 1020–1026.

CASWeb of Science®Google ScholarTakahashi K., Mineuchi K., Nakamura T., Koizumi M. & Kano H. (1994) A system for imaging transverse distribution of scattered light and chlorophyll fluorescence in intact rice leaves. Plant, Cell and Environment 17, 105–110.

Web of Science®Google ScholarTerashima I. (1986) Dorsiventrality in photosynthetic light response curves of a leaf. Journal of Experimental Botany 37, 399–405.

Web of Science®Google ScholarTerashima I. & Evans J.R. (1988) Effects of light and nitrogen nutrition on the organization of the photosynthetic apparatus in spinach. Plant and Cell Physiology. 29, 143–155.

Terashima I. & Inoue Y. (1984) Comparative photosynthetic properties of palisade tissue chloroplasts and spongy tissue chloroplasts of Camellia japonica L. Functional adjustment of the photosynthetic apparatus to light environment within a leaf. Plant and Cell Physiology 25, 555–563.

Terashima I. & Inoue Y. (1985a) Palisade tissue chloroplasts and spongy tissue chloroplasts in spinach: biochemical and ultrastructural differences. Plant and Cell Physiology 26, 63–75.

Terashima I. & Inoue Y. (1985b) Vertical gradient in photosynthetic properties of spinach chloroplasts dependent on intra-leaf light environment. Plant and Cell Physiology 26, 781–785.

CASWeb of Science®Google ScholarTerashima I. & Saeki T. (1983) Light environment within a leaf. 1. Optical properties of paradermal sections of Camellia leaves with special reference to differences in the optical properties of palisade and spongy tissues. Plant and Cell Physiology 24, 1493–1501.

CASWeb of Science®Google ScholarTerashima I. & Saeki T. (1985) A new model for leaf photosynthesis incorporating the gradients of light environment and of photosynthetic properties of chloroplasts within a leaf. Annals of Botany 56, 489–499.

CASWeb of Science®Google ScholarUstin S.L., Jacquemoud S. & Govaerts Y. (2001) Simulation of photon transport in a three-dimensional leaf: implications for photosynthesis. Plant, Cell and Environment 24, 1095–1103.

Web of Science®Google ScholarVogelmann T.C. & Björn L.O. (1984) Measurement of light gradients and spectral regime in plant tissue with a fibre optic probe. Physiologia Plantarum 60, 361–368.

Web of Science®Google ScholarVogelmann T.C. & Evans J.R. (2002) Profiles of light absorption and chlorophyll within spinach leaves from chlorophyll fluorescence. Plant, Cell and Environment 25, 1313–1323.

Web of Science®Google ScholarVogelmann T.C. & Han T. (2000) Measurement of gradients of absorbed light in spinach leaves from chlorophyll fluorescence profiles. Plant, Cell and Environment 23, 1303–1311.

CASWeb of Science®Google ScholarVogelmann T.C., Bornman J.F. & Josserand S. (1989) Photosynthetic light gradients and spectral regime within leaves of Medicago sativa. Proceedings of the Philosophical Transactions of the Royal Society, London B 323, 411–421.

Web of Science®Google ScholarVogelmann T.C., Knapp A.K., McClean T.M. & Smith W.K. (1988) Measurement of light within plant tissues with fiber optic microprobes. Physiologia Plantarum 72, 623–630.

описание эксперимента

Восемь профилей фиксации CO2 были измерены с использованием двух ориентаций листьев (адаксиальная и абаксиальная), синего или зеленого света и 600 или 150 мкмоль квантов на м-2 с-1. Как и следовало ожидать, исходя из профилей поглощения света, фиксация CO2 под синим светом в основном происходила вблизи поверхности, воспринимающей свет. При зеленом свете фиксация CO2 продолжалась по всему листу, постепенно снижаясь на глубине более 200 мкм.

В качестве дополнительного испытания модели многослойного листа были проведены измерения газообмена и флуоресценции при монохроматическом свете. Скорость электронного потока была рассчитана на основе измерений обмена CO2 и показана как функция поглощенного излучения . Квантовый выход был на 22% ниже при синем свете по сравнению с зеленым светом.

 

Цитата

 

Квантовые выходы, измеренные с помощью флуоресценции хлорофилла, имеют тенденцию следовать кривым, предсказанным моделью для слоев, прилегающих к поверхности, воспринимающей свет. Более длинноволновая флуоресценция имела тенденцию иметь более высокие относительные квантовые выходы (b730 > b680), что согласуется с сигналом флуоресценции, исходящим из более глубоких слоев. Количественное согласие было очень близким для зеленого света, приложенного к любой поверхности, и для синего света,

Количество света, поглощаемого единицей хлорофилла, снижается с увеличением глубины листа . Снижение происходит быстрее для сильно поглощаемой длины волны (синего цвета), чем для зеленого света. Для перевернутого листа разница между длинами волн менее выражена. При нормальной ориентации профиль фотосинтетической способности на единицу хлорофилла весьма близок к профилю поглощения зеленого света на единицу хлорофилла. Однако в белом свете можно ожидать, что профиль света, поглощенного единицей хлорофилла, будет находиться между синей и зеленой кривыми.

Свет, поглощаемый единицей хлорофилла, как функция кумулятивного хлорофилла с адаксиальной поверхности. Кривые рассчитывали для зеленого и синего света путем деления профилей флуоресценции  на содержание хлорофилла в каждом слое, полученных на парадермальных срезах.

Терашима и Саэки (1985) опубликовали 10-слойную модель листа, в которой они рассчитали ослабление света с длиной волны 680 и 550 нм через лист. Оптические свойства слоев могли изменяться, а фотосинтетическая способность палисадных слоев отличалась от фотосинтетической способности слоев губчатой ткани.

Профиль поглощения света был получен путем визуализации флуоресценции хлорофилла поперечно разрезанного листа, получающего свет на адаксиальную или абаксиальную поверхность. При нормальной ориентации, так что свет падал на адаксиальную поверхность и попадал в мезофилл через палисадную ткань, поглощение света увеличивалось до максимума на глубине 65 мкм (синий) или 110 мкм (зеленый). 50% синего света поглощалось первоначальными 120 мкм ткани листа, тогда как для улавливания 50% зеленого света потребовалось 230 мкм. Когда лист был перевернут так, что свет проникал через губчатый мезофилл , максимальное поглощение происходило ближе к поверхности (39 и 65 мкм для синего и зеленого света соответственно) и в целом свет проникал не так глубоко. Для синего света 50% поглощалось первыми 85 мкм ткани листа и 155 мкм для зеленого света. ""

 

Джон Р. Эванс   Томас К. Фогельманн 

 

Цитата

А в обычной лампе, даже теплого свечения, он наиболее выражен.

реакции на спектральные соотношения -  наукоемкое занятие